Дмрв чистка спиртом: Правильная чистка дмрв. Чистка дмрв – выбираем подходящий очиститель и восстанавливаем датчик. Порядок очистки – пошаговая инструкция

Чистка ISCV на 1SZ-FE

Tux, Тюмень

ДВС — 1SZ литровый.
Выясняя причину вибрации (подробности здесь) решил докучи почистить ДЗ (дроссельную заслонку) и КХХ (клапан холостого хода) чтобы точно быть уверенным в их работоспособности.

— Часть первая —

1.1. Собственно снимаем нижнюю часть (которая ближе к Радиатору) с воздушным фильтром. Офф — на фото АКБ не закреплён т.к. я его только принёс после зарядки.

1.2. Отстёгиваем разъёмы с датчиков ДМРВ и с противоположной стороны слегка отогнув защёлку снимаем с корпуса вверх что-то наподобие вакуумного клапана, от которого идут тонкие шлангчики на абсорбер и ещё куда-то.

1.3. Откручиваем крепление верхней пластиковой части воздухозаборника (3 болта на 10 — два на клапанной крышке и один в районе ДЗ.

1.4. Снимаем и убираем в сторону верхнюю часть воздухозаборника. снимаем с горлышка ДЗ круглую уплотнительную резинку и убираем в сторону чтобы не уронить под авто.

Вот мы и подготовили полигон для чистки!
Первая часть разборки, самая простая, пройдена.

На этом этапе все желающие могут заняться чисткой ДМРВ, который прикручен сбоку второй части воздухозаборника. Я это делал медицинским спиртом и беличьей кисточкой.
Те, кто решил быстренько без заморочек прочистить суперактивным карбоклинером, могут начинать копить на новый ДМРВ (от карбоклинера он умрёт не сразу а постепенно в течении пары месяцев). Кто не верит — читать ЗДЕСЬ всю тему от начала до конца!
Особо богатые и ленивые могут либо купить спецсредство для чистки ДМРВ, либо вообще новую ДМРВ, либо отдать авто в сервис для чистки карбклинером с последующей покупкой нового ДМРВ. В принципе вообще могут решить проблему кардинально — купить новый авто.

Но… это не наш путь, и мы продолжаем чистку!

— Часть вторая —

2.1 Из обычной деревянной ветки с помощью ножа (в принципе выбор инструмента не ограничен, главное — результат!) делаем 2 чопика.

Они нам пригодятся для затыкания каналов системы охлаждения, подходящих к КХХ со стороны патрубков салонного обогрева.

2.2 Аккуратно снимаем все разьёмы — ДПДЗ (датчик положения дроссельной заслонки), КХХ (расшифровка выше) и прочие. Снимаем резиновый патрубок сапуна, и ещё один рядом с патрубками системы охлаждения. Отвинчиваем тросик акселератора и так же снимаем. Плюс снимаем защёлку крепления провода с разъёмом ДМРВ.

2.4 Отвинчиваем болты крепления ДЗ — два на 12 и один на 10

2.5 Аккуратно снимаем ДЗ с пластикового горлышка впускного коллектора и снова ищем резиновое уплотнительное кольцо и так же убираем его в надёжное место чтобы не потерять.

2.6 Наш узел ДЗ ещё не полностью отстёгнут от системы, остались 2 патрубка с ОЖ (охлаждающая жидкость). Берём плоскогубцы и сдвигаем зажимы в районе крепления патрубков. Далее поочерёдно их снимаем и сразу же глушим заранее приготовленным чопиком.

Будьте внимательны — не облейте себя остатками антифриза, который обязательно польётся с блока КХХ.

2.7 Собственно можно всю эту байду (ДЗ вместе с КХХ) брать и нести в удобное место для чистки.

Итак игрушка у нас в руках и следующий этап — отделение и чистка отдельно БДЗ и КХХ.

— Часть третья —

3.1 Откручиваем 4 болта крепления КХХ к ДЗ и аккуратно «располовиниваем» чтобы не облиться остатками ОЖ. Так же аккуратно уберите прокладку из углубления чтобы не потерять и чтобы не повредить карбоклинером.

3.2 теперь собственно надо открутить 2 болта крепления блока управления КХХ. Здесь сюрприз — болты под пятигранник. Я просто тупо пропилил шляпки под плоскую отвёртку и открутил спецдевайсом (кстати очень удобно таким воротком срывать затянутые болты и гайки)

3.3. После снятия управляющей части КХХ отчётливо видим что сам клапан это стержень с набалдашником, впрессованный в подшипник. В блок управления уходит часть с обмотками внутри магнитного набалдашника, с другой стороны вращается малый сектор от цилиндра, который собственно и перекрывает ход воздуха.

— Часть четвёртая —

4.1 Чистим ДЗ карбоклинером, ничего не трём — никаких оттираний, особенно саму заслонку — НЕ ТРОГАТЬ!!!
В процессе чистки открываем/закрываем заслонку для сливания отмытой грязи
Что имеем после чистки

4.2 Чистим КХХ так же карбоклинером. Я сначала напшикал в него и поставил откисать, в это время занимался чисткой ДЗ.
Потом Взял КХХ и вращая стержень (очень хорошо крутится, когда откиснет) промывал клапан с баллончика.

4.5 Переворачиваем все отмытые части и оставляем ненадолго просохнуть. Кто курит — самое время для перекура. Я в это время чистил одно из сопел ссыкалки в омывателе.

После перекура собираем всё в обратном порядке. Дважды проверяем подключение всех шлангов и разъёмов на авто
Далее заводим и проверяем работу ДВС. На этом фсё!

Благодарю всех, кто дочитал до конца.

Более 2000 руководств по ремонту и техническому обслуживанию автомобилей различных марок

Очиститель ДМРВ.

Чистим правильно! – AvtoTachki

Содержание

• Состав
• Как использовать?
• Особенности применения
• Можно ли чистить ДМРВ очистителем карбюратора?

Датчик массового расхода воздуха (ДМРВ) контролирует температуру и массу воздуха, поступающего в двигатель автомобиля. Бортовому компьютеру эта информация необходима для определения правильного количества топлива применительно ко всем условиям работы двигателя. Загрязнённый датчик может привести к перерасходу топлива, потерям в мощности, жёсткому запуску, остановке и даже проблемам с коробкой передач. Поэтому необходимость в надёжном очистителе ДМРВ очевидна.

Состав

Разрабатывается с целями эффективного удаления масла, грязи, мелких тканевых волокон и пыли с датчика без его повреждений. Основными компонентами очистителей датчика массового расхода воздуха являются:

1. Гексан, или его быстроиспаряющиеся производные.
2. Спиртосодержащий растворитель (обычно используется 91-процентный изопропиловый спирт).
3. Специальные добавки, которыми производители (основной из них – торговая марка Liqui Moly) защищают свои авторские права. Влияют в основном на запах и плотность.
4. Диоксид углерода в качестве противовоспламенителя состава в баллончике.

Смесь обычно реализуется в виде аэрозоля, поэтому вещества должны обладать высокой степенью дисперсности, не раздражать кожу и не оказывать вредного воздействия на окружающую среду. Физико-механические характеристики чаще всего применяемых составов (например, Luftmassensensor-Reiniger от Ликви Моли) составляют:

• Плотность, кг/м³ — 680…720.
• Кислотное число – 27…29.
• Температура воспламенения, ^ºС – не менее 250.

Как использовать?

Очистка ДМРВ должна выполняться всякий раз, когда меняются воздушные фильтры. Сам датчик располагается в воздушном канале между коробкой фильтра и корпусом дроссельной заслонки. Используя специальный инструмент, прибор аккуратно отсоединяется от электрических разъёмов.

На некоторых марках автомобилей устанавливаются расходомеры механического типа. Они не имеют мерных проволок, а потому и менее чувствительны к тщательности демонтажа.

Далее выполняется от 10 до 15 распылений на проволоку или пластину датчика. Состав наносят на все стороны датчика, включая клеммы и разъёмы. Платиновые провода весьма тонкие, поэтому протирать их нельзя. После полного высыхания состава прибор можно вернуть на прежнее место. Хороший спрей не должен оставлять следов и разводов на поверхности ДМРВ.

Особенности применения

Нюансы определяются маркой автомобиля, где имеется ДМРВ. От этого, в частности, зависит выбор монтажных инструментов, используемых для вывинчивания крепежа.

Никогда не следует использовать очиститель ДМРВ при работающем двигателе или включённом зажигании. Это может привести к серьёзному повреждению датчика, поэтому его отключение необходимо выполнять только при отсутствия тока в системе.

Перед опрыскиванием датчик размещают на чистом полотенце. Вести очистку необходимо так, чтобы не коснуться любого из чувствительных элементов соплом аэрозольной головки.

Для улучшения очищающего эффекта рекомендуется предварительная промывка поверхности ДМРВ. Для этого узел помещают в полиэтиленовый пакет, заполненный изопропиловым спиртом, и несколько раз энергично встряхивают. После высыхания применяют очиститель датчика массового расхода воздуха.

Чистка ДМРВ. Промывка расходомера. LIQUI MOLY.

Смотрите это видео на YouTube

Можно ли чистить ДМРВ очистителем карбюратора?

Для электронных датчиков использовать карбюраторные очистители не рекомендуется! Химикаты, которые входят в состав этих средств, могут вызвать необратимые повреждения чувствительных элементов. Однако применение подобных составов для чистки механических расходомеров не исключается. Впрочем, и здесь лучше использовать специализированные вещества, например, бюджетные очистители, предлагаемые торговой маркой Kerry.

Необходимо предупредить владельцев автомобилей, имеющих подобные датчики, и от других ошибок:

• Очистки с применением более активных растворителей: это может вызвать деформацию пластиковых деталей самого датчика и его корпуса.
• Использованию марок очистителя, не рекомендованных производителем автомобиля.
• Очистки ДМРВ средствами, которые применяются для очистки корпуса дроссельной заслонки.
• Устанавливать обратно невысохший после обработки узел.

Чистый датчик может восстановить от 4 до 10 лошадиных сил мощности автомобиля, что вполне оправдывает затраты времени и средств для очистки. Подобную профилактику рекомендуется выполнять раз в год.

Проверяем исправность датчика ДМРВ при помощи мультиметра

Смотрите это видео на YouTube

Как почистить Apple Watch

Узнайте, как почистить Apple Watch и ремешок.

Можно ли использовать дезинфицирующее средство для Apple Watch?
С помощью салфетки, состоящей из 70-процентного изопропилового спирта, 75-процентной салфетки из этилового спирта, или дезинфицирующих салфеток Clorox можно осторожно протирать внешние поверхности Apple Watch и ремешка Solo Loop, спортивного ремешка, спортивного ремешка Nike, ремешка Ocean или металлического ремешка.

. Не используйте на тканевых или кожаных ремешках. Не используйте продукты, содержащие отбеливатель или перекись водорода. Избегайте попадания влаги в любые отверстия и не погружайте Apple Watch в какие-либо чистящие средства.

Получите полезные советы, как избежать раздражения кожи, особенно если у вас аллергия или повышенная чувствительность кожи.

Очистите и высушите Apple Watch

Содержите Apple Watch в чистоте и сухости. Мыло, чистящие средства, абразивные материалы*, сжатый воздух, ультразвуковая очистка и внешние источники тепла могут привести к повреждению и не должны использоваться с Apple Watch.

Чтобы почистить Apple Watch, выполните следующие действия:

1. Выключите Apple Watch и отсоедините их от зарядного устройства.
2. Если у вас есть кожаный ремешок, снимите его с Apple Watch.
3. Протирайте Apple Watch неабразивной безворсовой тканью. При необходимости слегка смочите ткань пресной водой. Если на ваших Apple Watch есть вещества или мусор, видимые в таких местах, как порты динамика, вы можете подержать Apple Watch под слабо проточной теплой пресной водой, пока они не очистятся. Нельзя использовать мыло и другие чистящие средства.
4. Протрите Apple Watch неабразивной безворсовой тканью, включая поверхность заднего стекла.

* Apple Watch изготавливаются с особой тщательностью и точностью, в них используются самые современные технологии для обеспечения наилучшего обслуживания клиентов. Apple не рекомендует полировать или натирать часы абразивными материалами, чтобы гарантировать сохранение всех функциональных возможностей часов, а также однородную отделку корпуса и внешних компонентов.

Очистите и высушите цифровую корону

Если цифровая корона застряла или не двигается, проверьте на наличие мусора и протрите Apple Watch. Если вы обнаружите какие-либо вещества вокруг цифровой короны, выполните следующие действия, чтобы очистить ее, и повторите при необходимости:

1. Выключите Apple Watch и отсоедините их от зарядного устройства.
2. Если у вас есть кожаный ремешок, снимите его с Apple Watch.
№
3. Держите цифровую корону под слабо проточной теплой пресной водой из-под крана. Нельзя использовать мыло и другие чистящие средства.
4. Непрерывно поворачивайте и нажимайте на цифровую корону, пока вода стекает через небольшой зазор между заводной головкой и корпусом.

После того, как мусор или вещество будет смыто, протрите Apple Watch впитывающей, неабразивной и безворсовой тканью. Поворачивайте и нажимайте на цифровую корону во время сушки и обязательно удаляйте воду с поверхности цифровой короны, пространства между цифровой короной и корпусом часов и окружающих поверхностей.

Очистите и высушите ремешок Apple Watch

Перед очисткой снимите ремешок с Apple Watch. Эта информация об очистке относится только к ремешкам марки Apple. Для всех других ремешков следуйте инструкциям по уходу, прилагаемым к ремешку.

Для кожаных ремешков:

1. Протрите кожаные части ремешков неабразивной безворсовой тканью. При необходимости слегка смочите ткань пресной водой.*
2. Не замачивайте кожаные ремешки в воде. Кожаные ремешки не водостойкие.
3. Дайте ремешку полностью высохнуть на воздухе, прежде чем прикреплять его к Apple Watch. Не храните кожаные ремешки под прямыми солнечными лучами, при высоких температурах или высокой влажности.

Для ремешка Solo Loop, плетеного ремешка Solo Loop, спортивного ремешка, ремешка Sport Loop, ремешка Ocean Band, ремешка Alpine Loop и ремешка Trail Loop:

1. Протрите ремешок неабразивной безворсовой тканью. При необходимости слегка смочите ткань пресной водой. С этими ремешками вы также можете использовать мягкое гипоаллергенное мыло для рук для очистки.
2. Протрите ремешок неабразивной безворсовой тканью, прежде чем прикреплять его к Apple Watch.

Для всех остальных ремешков, пряжек и застежек:

1. Протрите ремешок неабразивной безворсовой тканью. При необходимости слегка смочите ткань пресной водой.
2. Протрите ремешок неабразивной безворсовой тканью, прежде чем прикреплять его к Apple Watch.

* Кожа обычно покрывается патиной после естественной носки. Кожа также может изменить цвет из-за воздействия таких веществ, как духи, средство от насекомых, масло, лосьон или окрашенные материалы, такие как джинсовая ткань. Цвета Apple Watch и ремешка могут меняться или исчезать со временем.

Советы, как избежать раздражения кожи, а также если у вас аллергия или повышенная чувствительность кожи

• Ношение Apple Watch с правильной посадкой — не слишком тугой, не слишком свободной и с пространством для дыхания кожи — поможет вам комфортный.
• Содержание Apple Watch и ремешков, а также кожи в чистоте и сухости обеспечит максимальный комфорт и предотвратит повреждение часов в долгосрочной перспективе. Это особенно важно после тренировок или воздействия жидкостей, таких как пот, мыло, солнцезащитный крем и лосьоны, которые потенциально могут вызвать раздражение кожи.
• Выберите подходящие Apple Watch и ремешок. Если у вас есть аллергия или чувствительность к таким веществам, как металлы или пластмассы, проверьте материалы, из которых изготовлены все Apple Watch и ремешок.
• Многие сторонние производители производят ремешки для аксессуаров для Apple Watch. Такие ремешки могут не подходить по размеру, мешать работе функции Apple Watch Wrist Detect, могут содержать материалы, вызывающие чувствительность кожи или другие проблемы со здоровьем, и даже могут повредить Apple Watch. Для достижения наилучших результатов используйте только ремешки марки Apple или разрешенные Apple.

Информация о продуктах, не производимых Apple, или о независимых веб-сайтах, не контролируемых и не тестируемых Apple, предоставляется без рекомендации или одобрения. Apple не несет ответственности за выбор, работу или использование сторонних веб-сайтов или продуктов. Apple не делает никаких заявлений относительно точности или надежности сторонних веб-сайтов. Свяжитесь с продавцом для получения дополнительной информации.

Дата публикации: 22 сентября 2022 г.

Спирт, используемый для очистки места венепункции, не подвергает опасности измерение содержания алкоголя в крови и плазме с помощью парофазной газовой хроматографии и ферментативного анализа

Biochem Med (Загреб). 2017 15 июня; 27(2): 398–403.

Published online 2017 Jun 15. doi: 10.11613/BM.2017.041

, ^{1, 2} , ^{1, 3} , ⁴ , ² , ² and ⁴

Информация об авторе Примечания к статье Информация об авторских правах и лицензиях Отказ от ответственности

Введение

Это исследование было направлено на то, чтобы установить, может ли спиртовой антисептик, протертый или не протертый перед венепункцией, поставить под угрозу тестирование алкоголя с помощью коммерческого ферментативного анализа и эталонного метода парофазной газовой хроматографии (ГХ).

Материалы и методы

Венозная кровь была собрана у 23 здоровых добровольцев двумя последовательными процедурами. При первом заборе крови 2 мл спиртового антисептика (0,5% хлоргексидин, 70% этанол) наносили на мерную салфетку, место венепункции правой руки очищали, но перед флеботомией антисептику не давали высохнуть. При втором заборе крови 2 мл того же спиртового антисептика помещали на другую калибровочную подушку, очищали место венепункции левого повреждения и тщательно очищали от антисептика перед флеботомией. Этанол измеряли эталонным методом ГХ в цельной крови и плазме с ЭДТА, а также коммерческим ферментативным анализом в плазме с ЭДТА.

Результаты

Ни один субъект не жаловался на ощущение особого зуда, когда перед проколом вены не протирали спиртом. Концентрация алкоголя во всех образцах плазмы с ЭДТА всегда была ниже предела обнаружения ферментативного анализа (, т.е. , 2,2 ммоль/л; 0,1 г/л). Точно так же концентрация алкоголя также не определялась с помощью эталонного метода ГХ (, т.е. , <0,22 ммоль/л; 0,01 г/л) в плазме с ЭДТА и цельной крови.

Вывод

Представляется разумным заключить, что использование этанолсодержащих антисептиков перед венепункцией не может быть причиной ложных или ложноположительных результатов измерения алкоголя, по крайней мере, когда можно выполнить идеальные венепункции.

Ключевые слова: лабораторные исследования, диагностика, алкоголь, ошибки, преаналитический этап со сбором анамнеза, медицинским осмотром, измерением артериального давления, частоты сердечных сокращений и температуры ( 3 ). Взятие крови является важной практикой для получения подходящего материала (, т.е. , цельная кровь, сыворотка или плазма), с помощью которого можно проводить подавляющее большинство лабораторных тестов ( 4 ). Независимо от того, какое из многих существующих руководств по сбору крови следует флеботомисту, необходимость точной дезинфекции кожи в месте венепункции всегда считается необходимым мероприятием для предотвращения бактериемии. В частности, рекомендации Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) требуют, чтобы место венепункции было очищено тампоном, смоченным 70% спиртом, после чего спирту нужно дать высохнуть не менее 30 секунд, прежде чем прокалывать вену (9).0138 5 ). Алкоголь предпочтительнее повидон-йода из-за того, что заражение крови этим последним антисептиком может привести к ложно повышенным значениям калия, фосфора или мочевой кислоты ( 5 ). Документ h4-A6 Института клинических и лабораторных стандартов (CLSI) также требует обязательной дезинфекции кожи 70% изопропиловым спиртом или этанолом перед венепункцией ( 6 ). Как и в рекомендациях ВОЗ, CLSI также рекомендует, чтобы спирт полностью высох перед введением иглы в вену (9).0138 6 ). Хорватское общество медицинской биохимии и лабораторной медицины опубликовало национальные рекомендации, в которых рекомендуется тщательно дезинфицировать место венепункции 70% изопропиловым спиртом или этанолом, помещенным на стерильную вату или марлевую подушечку перед взятием крови ( 7 ). Примечательно, что при измерении содержания алкоголя в крови хорватские руководства также рекомендуют использовать безалкогольные дезинфицирующие средства (, т.е. , эфир или бензол). Наконец, в рекомендациях Итальянского общества клинической биохимии и клинической молекулярной биологии (SIBioC) рекомендуется, чтобы кожа в месте венепункции была очищена соответствующим спиртовым антисептиком, который затем должен высохнуть перед пункцией вены (9). 0138 8 ).

Лабораторное измерение содержания алкоголя в цельной крови, сыворотке или плазме крови, помимо его использования в судебной медицине для получения подтверждающих доказательств нарушений во время вождения, имеет решающее значение для диагностики злоупотребления алкоголем или токсичности ( 9 , 10 ). Несмотря на то, что парофазная газовая хроматография (ГХ) остается золотым стандартом измерения алкоголя в целях судебной медицины, оценка содержания алкоголя в рутинных клинических лабораториях обычно выполняется ферментативными методами, большинство из которых основано на методе алкогольдегидрогеназы (9).0138 11 , 12 ). Использование ферментативных тестов в клинической практике оправдано многими практическими причинами, такими как пригодность для автоматизации, более короткое время выполнения (TAT), более низкие затраты и отсутствие необходимости в специализированном персонале для проведения теста по сравнению с GC.

За исключением рекомендаций Хорватского общества медицинской биохимии и лабораторной медицины, указание на использование этанола или других алкогольных антисептиков перед забором крови является одним из общих аспектов всех других руководств. Хотя два отдельных исследования ясно продемонстрировали, что отказ от протирания спиртом не связан с ложным гемолизом или разбавлением образца, вопрос потенциального загрязнения образца спиртом, используемым для промывания места венепункции, остается предметом дискуссий (9).0138 13 , 14 ). Использование спирта для очистки места венепункции признано возможным источником загрязнения образцов крови с 1976 года ( 15 ). Кроме того, также было продемонстрировано, что алкоголь может всасываться через неповрежденную кожу взрослых людей, что приводит к едва измеримому уровню алкоголя в крови, составляющему от 0,01 до 0,04 ммоль/л ( 16 ). Риск заражения образцов крови может быть увеличен, если флеботомист не дает спирту высохнуть в течение как минимум 30 секунд перед проколом вены, что оправдано для предотвращения длительного наложения жгута и последующего риска гемоконцентрации и ложного увеличения. некоторых измеримых аналитов в крови ( 17 ). Примечательно, что этот аспект может иметь существенное судебно-медицинское значение, поскольку предел содержания алкоголя в крови (BAC) за вождение в нетрезвом виде в Европе составляет в среднем 10,8 ммоль/л (, т. е. , 0,5 г/л), но колеблется от 0 ммоль/л Румыния, Словакия, Венгрия и Чешская Республика, до 17,4 ммоль/л ( т.е. , 0,8 г/л) на Мальте и в Великобритании ( 18 ). Что еще более важно, во многих европейских странах, включая Хорватию, Чехию, Германию, Венгрию, Италию, Литву, Румынию, Словакию и Словению, предел содержания алкоголя в крови для водителей-новичков установлен на уровне 0 ммоль/л (9).0138 18 ). Хотя некоторые местные судебно-медицинские нормативные акты в настоящее время не рекомендуют использовать спиртосодержащие антисептики для очистки кожи перед забором крови для анализа на алкоголь ( 19 ), реальная мировая практика часто отличается от теории, поскольку в исследованиях сообщается, что использование спиртосодержащих антисептиков нежелательно. на самом деле обычное дело при заборе крови на BAC ( 20 ). Это неудивительно, поскольку приобретение пробирок для крови, интегрированных систем сбора крови, а также других инструментов для кровопускания, таких как (спиртовые) антисептики, жгуты, ватные или калибровочные подушечки, в настоящее время регулируется региональными или национальными тендерами во многих странах мира, поэтому что местная закупка этих материалов для определенных типов забора крови больше не разрешена некоторыми администрациями больниц (9). 0138 21 ).

Таким образом, целью данного исследования было выяснить, может ли использование спиртосодержащего антисептика, а также отказ от протирания спиртом перед венепункцией влиять на измерение содержания алкоголя в плазме и цельной крови с использованием эталонного парофазного анализа. Техника ГХ и обычный ферментативный анализ.

Дизайн исследования и забор крови

Исследуемая популяция состояла из 23 предположительно здоровых лаборантов (18 женщин и 5 мужчин; средний возраст 49 лет).± 8 лет; индекс массы тела 24,7 ± 4,7 кг/м ² ), добровольно принявших участие в данном исследовании. Соблюдались две последовательные процедуры сбора венозной крови у каждого добровольца, который воздерживался от приема пищи и употребления алкогольных напитков в течение не менее 8 часов до исследования. Первый забор крови проводили на правой руке следующим образом. С помощью пипетки (Eppendorf Reference 100–1000 мкл пипетка; Eppendorf, Марбург, Германия) наносили 2 мл спиртового антисептика (0,5% диглюконата хлоргексидина и 70% этанола; Neoxinal Alcolico; Nuova Farmec, Верона, Италия) на 30-мм предварительно упакованная калибровочная подушка (Luigi Salivari SPA, Флоренция, Италия). Это количество алкоголя соответствует примерному объему, который медсестры в нашей больнице вручную помещают на измерительную пластину. Накладывали жгут, очищали место венепункции, не давали антисептику высохнуть и в течение 5 секунд после очищения вводили иглу в вену. Кровь собирали в вакуумированную пробирку объемом 6 мл, содержащую K ₂ ЭДТА (Vacutest Kima, содержит 10,8 мг спрея K ₂ ЭДТА, код 135400; Kima, Падуя, Италия). Затем был проведен второй забор крови на левой руке следующим образом. Та же самая пипетка (Eppendorf Reference) была использована для помещения 2 мл того же спиртового антисептика (Neoxinal Alcolico; Nuova Farmec, Верона, Италия) на другую предварительно упакованную калибровочную подушку диаметром 30 мм (Luigi Salivari SPA, Флоренция, Италия). Наложили жгут, очистили место венепункции, но антисептик тщательно высушил с помощью другого ватного тампона диаметром 30 мм круговыми движениями от центра к периферии в соответствии с рекомендациями Хорватского общества медицинской биохимии и лабораторной медицины (9). 0138 7 ). Иглу окончательно вводили в вену через 5 секунд после высыхания антисептика. Кровь собирали в другую вакуумированную пробирку объемом 6 мл, содержащую К ₂ ЭДТА (Кима, Падуя, Италия).

При каждой венепункции кровь собирали непосредственно в пробирку для откачанной крови через прямую иглу калибра 19. Все процедуры венепункции ( т.е. ., очищение кожи и получение крови) были стандартизированы в соответствии с национальными рекомендациями ( 8 , 22 ) и выполняется одним и тем же специалистом-флеботомистом. Во всех случаях игла извлекалась из вены после того, как пробирка для крови была полностью заполнена и извлечена из держателя, как при оптимальной венепункции. Во время венепункции также тщательно избегали контакта между иглой и калибровочной подушечкой. Сразу после сбора пробирки с кровью перемешивали 4-кратным осторожным переворачиванием. Затем кровь в каждой первичной пробирке делили на две идентичные аликвоты, первую из которых использовали для проведения ГХ-анализа, а вторую — для ферментативного анализа. Обе аликвоты всегда хранили закрытыми до проведения измерений. Тестирование на алкоголь проводилось с помощью эталонного метода ГХ с использованием как крови с ЭДТА, так и плазмы с ЭДТА, тогда как ферментативная оценка выполнялась с использованием плазмы с ЭДТА. Плазму с ЭДТА получали после центрифугирования аликвот цельной крови при 3000 g в течение 15 мин при комнатной температуре.

Методы

Концентрацию этанола измеряли с помощью эталонного метода CG, как в крови, так и в плазме ЭДТА. Вкратце, этанол сначала измеряли в цельной крови, открывая пробирку и удаляя 100 мкл цельной крови. Затем образец немедленно закрывали, чтобы предотвратить испарение спирта, центрифугировали для отделения плазмы от клеток крови и, наконец, измеряли концентрацию этанола в плазме с ЭДТА. Измерение содержания алкоголя с помощью эталонного метода газовой газовой хроматографии в свободном пространстве было выполнено с использованием полностью оптимизированного анализатора паровой газовой хроматографии Young Lin 6100 с усовершенствованным пневматическим управлением и пламенно-ионизационным детектором (Young Lin Instrument Co. , Аньян, Корея). И плазму с ЭДТА, и цельную кровь смешивали 1:5 с внутренним стандартом (трет-бутиловый спирт в концентрации 0,09).75 г/л; Carlo Erba Reagents, Cornaredo, Италия). В систему вводили общий объем образца 1250 мкл. Температура шприца составляла 80°С, а изотермическое разделение проводили при 40°С. Внутренний стандарт качества (Carlo Erba Reagents, Cornaredo, Италия) с концентрацией этанола 5,4 ммоль/л также измерялся каждые 5 испытуемых образцов. Нижний предел обнаружения этой методики составляет 0,22 ммоль/л (, т.е. , 0,01 г/л).

Концентрацию алкоголя в плазме ЭДТА также измеряли с помощью анализатора Roche Cobas 6000 (Roche Diagnostics GmbH, Мангейм, Германия) с оригинальным коммерческим реагентом Roche (Roche Diagnostics GmbH, Мангейм, Германия), основанным на алкогольдегидрогеназном методе. . В предыдущем исследовании было обнаружено, что погрешность этого анализа составляет 2,4% при концентрации этанола в плазме 31,6 ммоль/л ( 23 ), в то время как диапазон измерений теста заявлен производителем в диапазоне от 2,2 до 108 ммоль/л.

Все испытуемые подписали письменное согласие на участие в этом исследовании, которое проводилось в соответствии с Хельсинкской декларацией, в соответствии с положениями соответствующего местного законодательства и было одобрено местным Этическим комитетом (Университетская клиника Вероны, Верона, Италия – SOPAV2, номер протокола 35747, дата утверждения: 25 июля 2016 г.).

Ни один субъект не жаловался на ощущение особого зуда, когда перед проколом вены не протирали спиртом. Установлено, что концентрация алкоголя во всех образцах плазмы с ЭДТА всегда ниже предела обнаружения ферментативного анализа (, т.е. , < 2,2 ммоль/л; < 0,10 г/л). Точно так же концентрация алкоголя также не определялась эталонным методом ГХ (, т.е. , <0,22 ммоль/л; <0,01 г/л) во всех образцах плазмы и цельной крови с ЭДТА.

Ранее были опубликованы противоречивые данные об измерении содержания алкоголя при обработке места венепункции спиртосодержащими антисептиками.

Первое предупреждение о возможных помехах от использования спиртовых антисептиков для очистки места венепункции было опубликовано Мюллером и Хундтом в 1976 ( 15 ). В своем элегантном исследовании авторы собрали три последовательных вакуумированных пробирки с кровью от каждого из 10 здоровых добровольцев для измерения концентрации этанола с помощью ГХ. Кожу обрабатывали антисептиком, содержащим 10 % хлоргексидина и 70 % этанола. Прежде чем произошло испарение алкоголя, игла была введена в вену, и первые две пробирки с кровью были полностью заполнены, тогда как игла была извлечена из вены, пока третья пробирка с кровью все еще аспирировалась. Важно отметить, что присутствие этанола на коже не приводило к измеримой концентрации алкоголя в крови в первых двух пробирках, в то время как измеримая концентрация алкоголя в крови была обнаружена в третьей пробирке у восьми из десяти испытуемых со значениями алкоголя в крови между 0,4 — 743,9ммоль/л.

В следующем исследовании Goldfinger и Schaber измерили концентрацию алкоголя с помощью ферментативного анализа у 25 неотложных пациентов после сбора крови спиртовой прокладкой на одной руке и не содержащим спирта бактерицидным раствором на другой ( 24 ). Никакой существенной разницы в BAC, полученной любым из методов подготовки кожи, не наблюдалось.

Противоположные результаты были опубликованы Peek et al. ( 25 ). Вкратце, авторы собрали кровь у 10 здоровых добровольцев во время употребления алкоголя, либо очистив место венепункции абсолютным этанолом на одной руке, либо оставив место венепункции без мазка на противоположной руке. Выявлено значительное повышение концентрации этанола в крови (до 3,9ммоль/л) в образцах, взятых из руки, обработанной этанолом, по сравнению с рукой, не подвергавшейся тампонированию. В отличие от этих результатов концентрация этанола в крови не изменилась при замене этанола изопропанолом.

McIvor и Cosbey измерили BAC с помощью ГХ в свободном пространстве у 20 субъектов, у которых кровь была взята после пропитки места венепункции этанолом, изопропиловым спиртом или безалкогольным цетримидом/хлоргексидином тампона, и пришли к выводу, что умеренное вмешательство этанола может можно оценить, используя тампоны для очистки кожи на спиртовой основе ( 26 ). Malingré изучал возможное влияние очистки места венепункции спиртовым тампоном путем измерения концентрации этанола в крови с использованием как ГХ, так и ферментативного анализа у 50 пациентов в возрасте ≤ 12 лет и у 20 здоровых добровольцев ( 27 ). Ни в одном образце не удалось измерить концентрацию этанола в крови (, т.е. , < 4,3 ммоль/л во всех случаях). Спорные доказательства были предоставлены Higuchi et al. , который собрал кровь у 40 здоровых людей после очистки места венепункции этанолом или физиологическим раствором (9).0138 20 ). Хотя с помощью референтного метода ГХ не удалось зарегистрировать поглощение кровью этанола или физиологического раствора, когда обе жидкости высохли в течение 1 минуты, тем не менее, минимальное потребление алкоголя (, т.е. , около 0,2 ммоль/л) было отмечено в 40% случаев. процентов испытуемых, когда венепункцию производили сразу после обработки кожи этанолом ( т.е. ., в течение 5 секунд, как в нашем исследовании). Уровень заражения значительно увеличивался до 70%, когда игла произвольно касалась или протиралась ватным тампоном, пропитанным этанолом.

В последующем исследовании с участием пяти добровольцев Miller et al. , показали, что использование прокладок для подготовки кожи, содержащих 70% изопропилового спирта, вряд ли приведет к ложноположительному уровню этанола в крови при использовании ферментативного анализа, поскольку все результаты теста оказались ниже предела обнаружения анализа (). т.е. ., 1,1 ммоль/л) ( 28 ). Такер и Третьюи провели интересное исследование, основанное на смазывании одной руки 70% раствором изопропилового спирта, которому давали полностью высохнуть перед венепункцией, а другой руки — физиологическим раствором (9).0138 29 ). Концентрация этанола в крови, измеренная с помощью ферментативного анализа, не оказалась статистически значимой между двумя процедурами очистки. Противоположные результаты были получены в другом исследовании, проведенном Йигитом и Арсланом, которые описали случай 20-летнего пациента, который раздавил голову стволом дерева и был доставлен в больницу для оказания неотложной помощи ( 30 ). Анализ крови при поступлении пациента в отделение неотложной помощи показал очень высокий уровень содержания алкоголя в крови (, т.е. 9).0139 ., 98,3 ммоль/л), несмотря на то, что больной отрицал употребление каких-либо алкогольных напитков. Поскольку медсестра, взявшая кровь, призналась, что использовала спиртовой антисептик для обработки места венепункции, второй образец крови был взят после взятия мазка с кожи повидон-йодом. BAC в этом втором образце составлял 0,07 ммоль/л.

Наши результаты показывают, что недопущение испарения этанолсодержащего антисептика перед венепункцией не связано с измеримым количеством алкоголя в плазме с ЭДТА или цельной крови при использовании как обычного рутинного ферментативного анализа с пределом обнаружения 2,2 ммоль/л (, т.е. ., 0,1 г/л) и эталонной методики ГХ (предел обнаружения 0,22 ммоль/л; 0,01 г/л). Эти результаты, очевидно, относятся к условиям идеальной венепункции, выполненной квалифицированным флеботомистом в соответствии с местными рекомендациями. Таким образом, практика использования спиртовых антисептиков, а также недопущение испарения алкоголя перед пункцией вены могут быть безопасными и относительно безболезненными, когда тест на алкоголь назначается как для клинических, так и для судебно-медицинских целей, и строго соблюдаются рекомендации по венепункции.

По нашим данным, разумно заключить, что использование этанолсодержащих антисептиков перед венепункцией не может считаться серьезной причиной ложных или ложноположительных результатов измерения содержания алкоголя. Тем не менее, поскольку далеко не идеальная венепункция, вероятно, все же может привести к загрязнению собранной крови этанолсодержащими антисептиками, как показано в некоторых предыдущих исследованиях ( 15 , 20 ), мы предлагаем, чтобы сбор образцов крови для тестирование на алкоголь предпочтительно следует повторять всякий раз, когда оно происходит при одном или нескольких состояниях, перечисленных в , и что, возможно, безопаснее дать алкоголю испариться перед выполнением венепункции для судебно-медицинской экспертизы этанола.

Table 1

List of conditions potentially leading to contamination of blood tubes by alcohol-containing antiseptics

Conditions potentially leading to contamination of blood tubes by alcohol-containing antiseptics
Игла, на которую наткнулись ватой или калибровочной салфеткой, смоченной спиртом
Игла, протертой ватой или калибровочной салфеткой, смоченной спиртом
Венепункция, выполненная с помощью иглы, находящейся под давлением ватой или мерным тампоном, смоченным спиртом
Игла, извлеченная из вены во время аспирации крови из пробирки

Открыто в отдельном окне

02 02 02 02 02 02 02 02 : Не объявлено.

1. Лавери И., Ингрэм П. Венепункция: лучшая практика. Стенд Нурс. 2005; 19:55–65. 10.7748/ns2005.08.19.49.55.c3936 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Ялонго С., Бернардини С. Флеботомия, мост между лабораторией и пациентом. Биохим Мед (Загреб). 2016;26:17–33. 10.11613/BM.2016.002 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Бут К.А. Клинические процедуры оказания медицинской помощи. Макгроу-Хилл, Нью-Йорк, США; 2010. ISBN-13: 9780077340087. [Google Scholar]

4. Липпи Г., Сальваньо Г.Л., Монтаньяна М., Франчини М., Гвиди Г.К. Проблемы флеботомии и улучшение качества результатов лабораторных исследований. Клин Лаборатория. 2006; 52: 217–30. [PubMed] [Академия Google]

5. Всемирная организация здравоохранения. Рекомендации ВОЗ по забору крови: лучшие практики флеботомии. Пресс-центр ВОЗ, Женева, Швейцария; 2010. [Google Scholar]

6. Институт клинических и лабораторных стандартов. Процедуры забора диагностических образцов крови путем венепункции; утвержденное руководство – 6-е изд. Документ CLSI h4-A6. Уэйн, Пенсильвания: Институт клинических и лабораторных стандартов; 2007. [Google Scholar]

7. Николац Н., Шупак-Смолчич В., Шимундич А.М., Челап И., Хорватское общество медицинской биохимии и лабораторной медицины. Хорватское общество медицинской биохимии и лабораторной медицины: национальные рекомендации по забору венозной крови. Биохим Мед (Загреб). 2013; 23: 242–54. 10.11613/BM.2013.031 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Lippi G, Caputo M, Banfi G, Buttarello M, Cerotti F, Daves M, et al. Рекомендации по сбору венозной крови. Биохим клин. 2008; 32: 569–77. [Google Scholar]

9. Липпи Г., Плебани М. Фармакогеномика метаболизма алкоголя: значение для юридического тестирования. Clin Chem Lab Med. 2011;49:9–11. 10.1515/CCLM.2011.025 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Church AS, Witting MD. Лабораторные испытания на токсичность этанола, метанола, этиленгликоля и изопропанола. J Emerg Med. 1997;15:687–92. 10.1016/S0736-4679(97)00150-9 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Tagliaro F, Lubli G, Ghielmi S, Franchi D, Marigo M. Хроматографические методы определения алкоголя в крови. J Хроматогр. 1992; 580:161–90. 10.1016/0378-4347(92)80534-W [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Logan BK, Lowrie KJ, Turri JL, Yeakel JK, Limoges JF, Miles AK, et al. Рекомендации по токсикологическому расследованию случаев вождения в состоянии наркотического опьянения и ДТП со смертельным исходом. J Анальный токсикол. 2013; 37: 552–8. 10.1093/jat/bkt059 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

13. Salvagno GL, Danese E, Lima-Oliveira G, Guidi GC, Lippi G. Избегание протирания спиртом перед венепункцией не является источником ложного гемолиза. Биохим Мед (Загреб). 2013;23:201–5. 10.11613/BM.2013.023 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Сарма Д., Шарма Б., Шарма Д., Мэтью С. Спирт, используемый в качестве дезинфицирующего средства перед венепункцией, не приводит к гемолизу или разбавлению пробы. J Clin Diagn Res. 2016;10:BC16–8. 10.7860/jcdr/2016/15967.7245 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Müller FO, Hundt HKL. Письмо: Этиловый спирт: заражение образцов крови. S Afr Med J. 1976; 50:91. [PubMed] [Google Scholar]

16. Тернер П., Саид Б., Келси М.С. Кожное всасывание изопропилового спирта из коммерческого антисептика для рук: последствия его использования для обеззараживания рук. Джей Хосп заражает. 2004; 56: 287–90. 10.1016/j.jhin.2004.01.005 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Lima-Oliveira G, Lippi G, Salvagno GL, Montagnana M, Picheth G, Guidi GC. Эффективное сокращение времени наложения жгута после незначительной модификации процедуры сбора крови CLSI H03-A6. Биохим Мед (Загреб). 2013;23:308–15. 10.11613/BM.2013.037 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Европейский совет по безопасности на транспорте. Содержание алкоголя в крови (BAC) Ограничения вождения в нетрезвом виде в Европе. Доступно по адресу: http://etsc.eu/blood-alcohol-content-bac-drink-driving-limits-across-europe. Последнее обращение 1 апреля 2017 г.

19. Тейлор Л.Е., Оберман С., Оберман Т., редакторы. Защита от вождения в нетрезвом виде, 7-е издание. Филадельфия: Aspen Publishers Inc; 2010. [Google Scholar]

20. Higuchi A, Kurihara R, Yoshimoto T, Sano T, Katsumata K, Ishii A, et al. Проблемы с тестированием на содержание алкоголя в крови водителей с тяжелыми травмами доставлены в отделения неотложной помощи в Японии. Leg Med (Токио). 2005;7:299–305. 10.1016/j.legalmed.2005.05.003 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Lippi G, Cornes MP, Grankvist K, Nybo M, Simundic AM, Рабочая группа по преаналитической фазе (WG-PRE) Европейская федерация клинической химии и лабораторной медицины (EFLM). EFLM WG-Преаналитическая фаза заключения: локальная валидация пробирок для сбора крови в клинических лабораториях. Clin Chem Lab Med. 2016;54:755–60. 10.1515/cclm-2015-1274 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Lippi G, Mattiuzzi C, Banfi G, Buttarello M, Caputo M, Daves M, et al. Предложение контрольного листа для забора венозной крови. Биохим клин. 2013;•••:37312–7. [Академия Google]

23. Кочак Ф.Е., Исиклар О.О., Кочак Х., Мерал А. Сравнение стабильности этанола в крови при разных сроках хранения. Биохим Мед (Загреб). 2015;25:57–63. 10.11613/BM.2015.006 [бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. Goldfinger TM, Schaber D. Сравнение концентрации алкоголя в крови при применении безспиртовых и спиртосодержащих кожных антисептиков. Энн Эмерг Мед. 1982; 11: 665–7. 10.1016/S0196-0644(82)80260-6 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Peek GJ, Marsh A, Keating J, Ward RJ, Peters TJ. Влияние взятия мазка с кожи на видимую концентрацию этанола в крови. Алкоголь Алкоголь. 1990;25:639–40. 10.1093/oxfordjournals.alcalc.a045060 [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. McIvor RA, Cosbey SH. Эффект использования спиртовых и безалкогольных тампонов для очистки кожи при заборе крови для определения содержания алкоголя с помощью газовой хроматографии.